生物学基础实验教程(第三版)(I)-植物生物学实验、动物生物学实验、微生物学实验、细胞生物学实验、免疫学实验
定 价:68 元
丛书名:国家精品课程配套立体化教材
- 作者:滕利荣,孟庆繁主编
- 出版时间:2008/6/1
- ISBN:9787030220561
- 出 版 社:科学出版社
- 中图法分类:Q-33
- 页码:364
- 纸张:胶版纸
- 版次:3
- 开本:16K
本书是国家级精品课程"生物学基础实验"及国家级生物实验教学示范中心配套出版物之一。图书编写结合生物学实验特点,统筹设计实验项目,建立分层次、相互衔接的内容体系,按实验内容的内在联系设置综合性大实验,将并引入相关科研成果,使实验内容与科研、工程、社会应用项目密切联系,体现基础与前沿、经典与现代的有机结合,引导学生自主学习、合作学习和研究性学习,培养学生实践能力、创新能力和科学思维。
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生命科学是21世纪各国争先发展的学科之一,要实现我国生命科学的跨越式发展,培养具有国际竞争能力的创新型人才是关键。对于生命科学创新型人才的培养,实践教学是最佳切入点,通过实践教学不仅可以向学生传授生命科学知识,使其掌握娴熟的实验技能,培养其综合分析问题和解决问题能力,而且对于培养学生团结合作、严谨求实、勇于创新的科学品质和为人类造福的价值观具有重要作用。为了适应社会发展对人才培养的需要,我们不断深化实验教学体系、内容和方法的系统改革,并加强与之相适应的配套教材建设,使实验教学改革更有利于学生知识、能力和素质的全面协调发展。
本教材自1999年第一版、2004年第二版出版以来,深受读者欢迎,已被多所高校所采用。随着科学技术的快速发展,新知识、新技术和新方法不断诞生。为了保持实验内容的先进性,适应新形势下高素质创新型人才培养的需求,经征求广大读者使用意见,结合生物学实验教学改革的实践,决定对本教材再次修订。第三版修订中仍然秉承“加强基础、拓宽知识、培养能力、激励个性”的人才培养思想,坚持有利于学生自主学习、合作学习和研究性学习的原则,在保持第二版整体实验教学体系基础上,在实验内容上做了部分调整和部分实验内容的修改。
本书是国家精品课程——生物学基础实验的配套立体化教材之一,该系列教材包括:①《生物学基础实验教程(第三版)(Ⅰ)-植物生物学实验、动物生物学实验、微生物学实验、细胞生物学实验、免疫学实验》;②《生物学基础实验教程(第三版)(Ⅱ)——遗传学实验、生物化学实验、分子生物学实验》;③《高校教学实验室管理》;④《现代生命科学实践教学改革的研究》;⑤《生物学综合实验网络教程》(光盘);⑥普通高等教育“十一五”国家级规划教材《生命科学仪器使用技术教程》,共同组成生命科学实验教学系统的配套教材。
本书修订的实验项目选择设计时,结合“生物学基础实验”国家精品课程的建设和生物学自身的特点,按基本技术、宏观(个体)水平、细胞水平和分子水平4个层次统筹设计实验项目,避免了内容的重复,节省了学时。本书注重各门实验技术和实验方法的合理综合,注重实验内容与科研、生产和实际应用的密切联系,体现基础与前沿、经典与现代的有机结合,有利于学生自主学习、合作学习和研究性学习。同时,每门实验课后均设有设计创新实验。
第1分册按植物生物学实验、动物生物学实验、微生物学实验、细胞生物学实验、免疫学实验等实验内容分为5篇;第Ⅱ分册按遗传学实验、生物化学实验、分子生物学实验等实验内容分为3篇。每篇从基础性实验、综合性实验和设计创新性实验3个层面上设置实验项目。每个实验项目按相关理论知识、目的要求、实验原理、材料与器材、实验步骤、实验结果、注意事项、思考题等进行了系统编排。为了培养学生综合实践能力,加强了实验内容的科学综合;为了保持实验内容的先进性,将科学研究成果中技术先进、方法成熟、适合本科生教学的实验项目引入到实验教材;为了使实验教学内容与理论课内容合理衔接,本教材将理论课程内容涉及的实验内容独立出来,作为每个实验相关理论知识内容,列在每个实验之前。为了给学生创造个性发展和创新能力培养的空间环境,调动学生设计创新实验的积极性,激发学生设计创新实验热情,每门实验课程内容后面,设计创新实验,列出选题范围,让学生根据自己的兴趣爱好自主选题,设计研究方案,进行实验研究。另外,从实验原料的选用、实验路线设计、检测方法、统计学分析方法等多个方面进行了调整,使实验知识点训练更具有系统性、完整性和实用性。
本书由吉林大学生命科学学院、东北师范大学生命科学学院、吉林大学白求恩医学院、吉林大学畜牧兽医学院、吉林大学珠海分校、长春理工大学生命科学与技术学院和长春工业大学化学与生命科学学院等单位长期从事实验教学工作、潜心钻研实验教学改革、科学研究有所建树的教师集体编写,他们为此书的撰写付出了艰辛劳动。科学出版社单冉东编辑也为系列图书编写和顺利出版提供大力支持,在此一并表示感谢!
目 录
第三版前言
第二版前言
第一版前言
第一篇 植物生物学实验
实验一 植物组织、器官的结构观察 3
一 植物组织的结构观察 3
二 被子植物营养器官的结构观察 6
三 被子植物繁殖器官的结构观察 10
实验二 植物理化性质的测定 19
一 植物组织水势的测定(小液流法) 19
二 植物呼吸强度的测定(小篮子法) 20
三 叶绿素的提取及性质测定 21
四 种子发芽率的快速测定 92
实验三 种子植物标本的采集、制作与保存 26
实验四 设计创新实验 29
第二篇 动物生物学实验
实验一 动物解剖及形态观察实验 33
一 眼虫及草履虫观察 34
二 蛔虫解剖及横切片观察 36
三 蝗虫外形及内部解剖 37
四 鲤鱼外形及内部解剖 40
五 蟾蜍外形及内部解剖 44
六 家鸡外形及内部解剖 49
七 家兔外形及内部解剖 52
实验二 动物机能实验 57
一 呼吸运动调节 58
二 蛙心室期前收缩与代偿间歇 60
三 坐骨神经腓肠肌标本制备及骨胳肌收缩性质的观察 61
四 蛙心室肌细胞动作电位以及心电与心肌收缩的时相关系 64
五 神经干的动作电位、传导速度及兴奋性测定 66
六 反射弧的分析 69
七 小脑受伤动物运动功能障碍的观察 70
八 大脑皮层运动机能定位 71
九 血压调节 72
十 去大脑僵直 75
实验三 人体机能检测实验 77
一 人体心音听诊 79
二 人体血压和肺活量测定 80
三 人体血型的鉴定 83
实验四 设计创新实验 85
第三篇 微生物学实验
实验一 土壤中微生物的分离纯化、培养观察及保藏 89
一 常用培养基的制备、灭菌 93
二 土壤中微生物的分离纯化及培养技术 103
三 细菌的形态观察 109
四 细菌细胞的生理生化反应 117
五 大肠杆菌生长曲线的测定 120
六 放线菌、霉菌和酵母菌的形态观察 121
七 微生物的测微技术 126
八 微生物菌种的保藏 128
实验二 厌氧茵的培养技术 135
一 用厌氧袋法培养丙酮丁醇梭菌 135
二 厌氧罐培养法 138
三 针筒厌氧培养法 140
实验三 细菌细胞数量的测定 144
一 直接计数法 144
二 光电比浊计数法 146
三 平板菌落计数法 147
四 多管发酵测定法 150
五 千重比色测定法 152
实验四 微生物诱变及突变株的筛选 155
一 紫外线与亚硝基胍的诱变效应 155
二 抗药性突变株的筛选 158
三 酵母菌营养缺陷型的筛选 160
实验五 昆虫病毒多角体的染色与观察 165
实验六 大肠杆菌噬茵体的分离、纯化及效价测定 167
实验七 动物病毒的鸡胚培养 169
实验八 抗茵肽效价的生物测定 172
实验九 乳酸发酵与乳酸茵饮料的制备 176
实验十 响应面法优化大肠杆菌的发酵条件 179
实验十一 利用微生物快速测定仪对微生物进行分类 183
实验十二 细菌的药敏试验——纸片扩散法 185
实验十三 柯赫法则——病原接种与致病性证实实验 188
实验十四 葡萄球菌的分离与鉴定 190
实验十五 设计创新实验 192
第四篇 细胞生物学实验
实验一 徒手切片、装片、涂片的制作及细胞结构的观察 195
一 徒手切片的制作及植物细胞观察 195
二 肠系膜装片的制备及脂肪细胞的染色观察 199
三 血细胞涂片的制备及细胞形态观察 201
四 活体染色及线粒体、液泡系的观察 202
五 细胞内酸性蛋白质和碱性蛋白质的观察 205
实验二 石蜡切片的制备及细胞的染色观察 207
一 石蜡切片的制备 207
二 细脆内多糖的PAS反应 213
三 DNA的Feulgen反应 214
四 Brachet反应——细胞内DNA、RNA的显示 216
实验三 细胞器的荧光标记技术 218
一 荧光显微镜观察口腔上皮细胞 218
二 细胞骨架的荧光标记 219
三 纺锤体的免疫荧光标记 224
四 利用脂质体的转染技术对HeLq细胞中重组GFP进行观察 226
实验四 电镜制片技术 228
一 超薄切片的制备 228
二 扫描电镜样品的制备 232
实验五 免疫胶体金技术 234
实验六 植物组织及细胞的培养 236
一 植物愈伤组织的诱导及分化 236
二 植物细胞的悬浮培养 238
三 原生质体的分离、融合与培养 239
实验七 动物细胞的培养 244
一 贴壁细胞的传代培养 244
二 小鼠胚胎细胞的原代培养 245
三 细胞的融合 246
四 细胞冻存与复苏 248
实验八 细胞的分离与鉴定 250
一 细胞器的分级分离 250
二 玉米线粒体的分离与观察 254
三 叶绿体分离及离体叶绿体对染料的还原作用 255
实验九 细胞生理性质实验 257
一 细胞膜透性观察 257
二 巨噬细胞吞噬现象的观察 258
实验十 细胞凋亡相关实验 260
一 细胞凋亡的形态学观察 261
二 凋亡细胞的碘化丙啶(PI)排斥分析法 261
三 细胞群染色体DNA断裂的测定 262
实验十一 利用RT-PCR技术检测HeLa细胞中p-actin的表达 265
实验十二 新生大鼠心脏细胞的分离和培养 268
实验十三 哺乳动物早熟染色体凝聚诱导 271
实验十四 设计创新实验 273
第五篇 免疫学实验
实验一 淋巴细胞动能检测 277
一 淋巴细胞的分离和计数 277
二 T淋巴细胞功能检测——转化试验 278
三 B淋巴细胞功能检测——溶血空斑试验 279
实验二 NK细胞功能检测 281
实验三 抗体的制备——多克隆抗体的制备 283
一 抗原的制备和纯化 283
二 动物的免疫 285
三 免疫血清的分离和纯化 286
四 血清抗体效价的测定 286
实验四抗体的制备——单克隆抗体的制备 287
实验五抗原抗体反应——凝集反应 292
直接凝集法测血型抗体效价(示范教学) 292
实验六利用流式细胞术进行双色淋巴细胞亚群分析 294
实验七抗原抗体反应——补体介导细胞毒实验 298
实验八免疫标记技术-ELISA(间接法) 300
实验九免疫标记——免疫组织化学技术 302
实验十免疫标记——免疫印记杂交技术 304
实验十一细胞因子检测技术 307
实验十二设计创新实验 309
主要参考文献 311
附录 313
附录1玻璃仪器的洗涤及各种洗涤液的配制 313
附录2培养基的常规配制程序 315
附录3微生物学实验试剂和溶液的配制 319
附录4微生物学常用染液的配制 320
附录5微生物学实验常用培养基的配制 299
附录6细胞生物学培养基剂配制方法 328
附录7细胞生物学实验试剂配制 331
附录8设计创新实验程序与要求 340